domingo, 31 de mayo de 2015

Práctica 1: determinación de lípidos

Título: Determinación de lípidos

Materiales: tubos de ensayo, gradilla, aceite, marcadores de vidrio, varilla de cristal, pinza, pipetas, mechero, vasos de precipitados, acetona, tinta china roja, solución de Sudán III, solución NaOH al 20%

Método: Para hacer la determinación de lípidos hemos utilizado el método de tinción. En un tubo de ensayo se echan 2 ml de aceite, y en otro tubo otros 2 ml. Después, en cada tubo, se vierten 5 gotas de Sudán III y de tinta roja, respectivamente. Esto nos ayudará a teñir los lípidos y así comprobar que están en el aceite.
El otro método que llevamos a cabo fue el de la saponificación. Consiste en echar otros 2 ml de aceite en un tubo de ensayo y ahí añadir 2 ml de solución de NaOH al 20%. Dejándolo reposar unos 20 o 30 minutos, en la parte superior del tubo se va a formar jabón.
También hicimos una prueba de la solubilidad de las grasas. Para ello utilizamos dos tubos de ensayo. En uno echamos 2 ml de aceite y 2 ml de agua, y en el otro 2 ml de aceite y 2 ml de acetona (que utilizamos como disolvente orgánico)

Resultados:
  • Tinción: con la solución de Sudán III, comprobamos que se teñía todo y se podían distinguir los lípidos. Con la tinta roja solamente se teñía el líquido.
  • Saponificación: después de esperar a que se llevara a cabo la reacción, en nuestros tubos de ensayo se podía diferenciar perfectamente el jabón que se había formado.
  • Solubilidad: el agua con el aceite no se mezclan, ya que son insolubles. Pero, con la acetona, se puede observar que nada más echarla en el aceite, se disuelven.












Reacción de saponificación



 Conclusiones: Viendo los resultados obtenidos llegamos a la conclusión de que:

  • Con la tinción podemos determinar si hay o no lípidos en una solución
  • Con la saponificación podemos formar jabón llevando a cabo una serie de reacciones químicas
  • Con la solubilidad comprobamos la capacidad de disolución de los lípidos en diferentes mezclas





domingo, 10 de mayo de 2015

Práctica 1: determinación de prótidos

Título: Determinación de prótidos

Materiales: tubos de ensayo, gradilla, mechero, vaso de precipitados, pipetas, solución de HCl concentrado, alcohol etílico, SO4Cu al 1%, NaOH al 20%, leche (y clara de huevo), Albúmina al 2%.
 
Método: Para hacer la determinación de prótidos, primero utilizamos la leche. Lo primero es hacer el experimento prueba, con agua, para comprobar que las pruebas dan negativo, al no haber prótidos en el agua.
Coagulación: en un tubo de ensayo, se echan 2 ó 3 ml de leche. Dicho tubo se pone al baño maría. En otro diferente, con la misma cantidad de leche, se añaden 2 ó 3 ml de HCl; en un último tubo con leche, se añaden 2 ó 3 ml de alcohol. Se esperan los resultados.
Pruebas de Biuret: en un nuevo tubo de ensayo, echaremos 3 ml de albúmina a los que añadimos 1 ml de sulfato de cobre (SO4Cu) y 3 ml de NaOH. Los tubos con la leche se dejan reposar, esperando la coagulación.
Todo este proceso se realiza de nuevo, pero esta vez utilizando clara de huevo en lugar de leche y albúmina.

 











Tubos de ensayo con leche al baño maría.


Resultados:En el tubo con la leche al baño maría, se puede observar la coagulación de las proteínas de la leche. La leche con el alcohol, también coagula; pero, con el ácido clorhídrico puede quedar un resultado positivo o negativo. La prueba de los reactivos de Biuret con la albúmina dan positivo, torna a un color morado.
En los tubos con la clara de huevo los resultados fueron todos positivos: las coagulaciones y las pruebas de Biuret.

 





A la izquierda la preuba con agua (azul, negativo), a la derecha la albúmina (morado, positivo)
















 Leche coagulada





 










 Clara de huevo coagulada




 











 Leche con los reactivos de Biuret: positivo.


Conclusiones: Viendo los resultados obtenidos llegamos a la conclusión de que, tanto la leche, como la albúmina, como el huevo, contienen proteínas.



domingo, 19 de abril de 2015

Práctica 6: determinación de glúcidos

Además de las prácticas anteriores, hicimos una más con un trozo de pan.
Una compañera de clase lo mastico hasta deshacerlo. Después lo mezclamos con agua para hacer una "disolución" y seguimos el mismo procedimiento que con las demás: 3mL de disolución, uno de Fehling A y otro de Fehling B. Se calienta y el resultado obtenido en este caso es, también positivo.
Lo que pretendíamos hayar con esta prueba es que nuestra saliva hace la misma función que los jugos gástricos, descomponiendo el almidón que contiene el pan en glucosa para poder ser digerida. Al salirnos un resultado positivo, la respuesta es que sí: la saliva es capaz de romper los enlaces de los polisacáridos, convirtiéndolos en monosacáridos.

También en un trozo de pan, para comprobar que había almidón. En dicho trozo echamos unas gotas de lugol y otra de betadine, que son los dos compuestos que son capaces de indicar si hay o no almidón. Al verter los dos líquidos sobre el pan, este se volvió morado, dando un resultado positivo.

Práctica 5: determinación de glúcidos

Título: Determinación de glúcidos, pruebas al almidón

Materiales: amidón, ácido clorhídrico (ClH), bicarbonato de sodio, lugol, betadine, reactivo de Fehling A, reactivo de Fehling B, tubos de ensayo, gradillas, mecheros de alcohol, pinzas, pipetas, pipeteadores.
 
Método: Esta disolución dio negativo en las pruebas de Fehling, así pues, intentaremos conseguir romper todos los enlaces para llegar a los monosacáridos. Primero, se echan 3mL de almidón en un tubo de ensayo. Ahí añadimos tres gotas de lugol, y vemos que la mezcla se vuelve de un tono morado, lo que indica un positivo en almidón. Después, en otro tubo, se echan 3mL de almidón de nuevo y se le añade 1mL de ácido clorhídrico. Esa mezcla se calienta durante 5 minutos con un mechero de alcohol. Se deja enfriar y, antes de seguir, se neutraliza el ClH echando 1mL de bicarbonato. Ahora ya podemos continuar con la reacción de Fehling, que se hace igual que en las anteriores prácticas: 1mL de cada reactivo en cada disolución. Se agita y se pone a calentar. Así se espera el resultado, que debe ser positivo.
Además, se hace una prueba con el betadine: 3mL de almidón y una gota de betadine. Esta mezcla también se vuelve morada, ya que el betadine, al igual que el lugol, contiene yodo, que nos ayuda a averiguar si hay o no almidón.

Resultados: El resultado obtenido ha sido positivo.Utilizando el ClH hemos conseguido romper todos los enlaces y convertir el almidón en glucosa.

Conclusiones: Viendo el resultado obtenido llegamos a la conclusión de que la glucosa se obtiene de diferentes compuestos. Hemos imitado la acción de nuestro estómago (con el ClH) y hemos averiguado que somos capaces de descomponer un polisacárido en monosacáridos (que son los que dan positivo en la reacción de Fehling).












Esta foto muestra el resultado positivo del almidón.

Práctica 4: determinación de glúcidos

Título: Determinación de glúcidos, pruebas a la sacarosa.

Materiales: sacarosa, ácido clorhídrico (ClH), bicarbonato de sodio, reactivo de Fehling A, reactivo de Fehling B, tubos de ensayo, gradillas, mecheros de alcohol, pinzas, pipetas, pipeteadores.
 
Método: Esta disolución dio negativo en las pruebas de Fehling, así pues, intentaremos conseguir romper todos los enlaces para llegar a los monosacáridos. Primero, se echan 3mL de sacarosa en un tubo de ensayo. Después, se le añade 1mL de ácido clorhídrico. Esa mezcla se calienta durante 5 minutos con un mechero de alcohol. Se deja enfriar y, antes de seguir, se neutraliza el ClH echando 1mL de bicarbonato. Ahora ya podemos continuar con la reacción de Fehling, que se hace igual que en las anteriores prácticas: 1mL de cada reactivo en cada disolución. Se agita y se pone a calentar. Así se espera el resultado, que debe ser positivo.

Resultados: El resultado obtenido ha sido positivo.Utilizando el ClH hemos conseguido romper todos los enlaces y convertir la sacarosa en glucosa.

Conclusiones: Viendo el resultado obtenido llegamos a la conclusión de que la glucosa se obtiene de diferentes compuestos. Hemos imitado la acción de nuestro estómago (con el ClH) y hemos averiguado que somos capaces de descomponer un disacárido en monosacáridos (que son los que dan positivo en la reacción de Fehling).












Sacarosa al terminar las pruebas: positivo.

Práctica 3: determinación de glúcidos

Título: Determinación de glúcidos, polisacáridos

Materiales: almidón, reactivo de Fehling A, reactivo de Fehling B, tubos de ensayo, gradillas, mecheros de alcohol, pinzas, pipetas, pipeteadores.
 
Método: Para hacer la determinación de glúcidos primero se realizan las disoluciones necesarias, en este caso al 5% (250mL), de almidón. En un tubo de ensayo se echan 3 mL de la disolución, ayudándonos de una pipeta. Después, a la muestra se le añaden 1mL de Fehling A, y otro de Fehling B. La mezcla obtenida se volverá azul. Agitamos para que se mezcle bien y se pone al fuego. Se debe calentar hasta que dé una reacción positiva o negativa. Si la mezcla se vuelve naranja, es positivo; si no, es un resultado negativo.

Resultados: El resultado obtenido fue negativo. El tubo que contenía el almidón no cambió al color naranja.

Conclusiones: Viendo el resultado obtenido llegamos a la conclusión de que para conseguir glucosa del almidón, hay que hacer más pruebas, no sólo calentarlo.









Almidón (centro): reacción negativa.

Práctica 2: determinación de glúcidos

Título: Determinación de glúcidos, disacáridos.

Materiales: Lactosa, sacarosa, reactivo de Fehling A, reactivo de Fehling B, tubos de ensayo, gradillas, mecheros de alcohol, pinzas, pipetas, pipeteadores.
 
Método: Para hacer la determinación de glúcidos primero se realizan las disoluciones necesarias, en este caso al 5% (250mL), de lactosa y sacarosa. En un tubo de ensayo se echan 3 mL de cada disolución, ayudándonos de una pipeta. Después, a cada muestra se le añaden 1mL de Fehling A, y otro de Fehling B. La mezcla obtenida se volverá azul. Agitamos para que se mezcle bien y se pone al fuego. Se debe calentar hasta que dé una reacción positiva o negativa. En este caso, una de las dos da una reacción positiva; la otra, negativa.

Resultados: Los resultados obtenidos fueron: positivo en lactosa y negativo en sacarosa. El tubo que contenía la disolución de lactosa se volvió naranja, mientras que el de sacarosa quedó azul.

Conclusiones: Viendo los resultados obtenidos llegamos a la conclusión de que la lactosa contiene glucosa, mientras que a la sacarosa hay que hacerle más pruebas para poder llegar a la glucosa.







En esta foto vemos la lactosa, el almidón (siguiente entrada del blog) y la sacarosa (respectivamente) con sendos resultados.